2.43
1.65
1.98
0,73
1.88
1.81
2.43
2.2 Стандартни вещества, използвани в калибрационната крива на относителното разпределение на молекулната маса: инсулин, микопептиди, глицин-глицин-тирозин-аргинин, глицин-глицин-глицин
3 Инструменти и оборудване
23.2
21.4
22.2
16.1
22.3
20.8
23.9
27.5
Като цяло, делът на аминокиселините в продуктите на Sustar е по-висок от този в продуктите на Zinpro.
Част 8 Последици от употребата
Влияние на различни източници на микроелементи върху производствените показатели и качеството на яйцата на кокошките носачки в късния период на снасяне
Производствен процес
Технология за целенасочено хелиране
Технология за емулгиране на срязване
Технология за пръскане и сушене под налягане
Технология за охлаждане и обезвлажняване
Усъвършенствана технология за контрол на околната среда
Приложение А: Методи за определяне на относителното разпределение на молекулната маса на пептидите
Приемане на стандарт: GB/T 22492-2008
1 Принцип на теста:
Определено е чрез високоефективна гел филтрационна хроматография. Тоест, използвайки порест пълнител като стационарна фаза, въз основа на разликата в относителния размер на молекулната маса на компонентите на пробата за разделяне, открита при пептидната връзка с дължина на вълната на ултравиолетовата абсорбция от 220 nm, с помощта на специализиран софтуер за обработка на данни за определяне на разпределението на относителната молекулна маса чрез гел филтрационна хроматография (т.е. GPC софтуер), хроматограмите и техните данни бяха обработени и изчислени, за да се получи размерът на относителната молекулна маса на соевия пептид и диапазонът на разпределение.
2. Реагенти
Експерименталната вода трябва да отговаря на спецификацията за вторична вода в GB/T6682, използваните реагенти, с изключение на специалните разпоредби, са аналитично чисти.
2.1 Реагентите включват ацетонитрил (хроматографски чист), трифлуорооцетна киселина (хроматографски чиста),
2.2 Стандартни вещества, използвани в калибрационната крива на относителното разпределение на молекулната маса: инсулин, микопептиди, глицин-глицин-тирозин-аргинин, глицин-глицин-глицин
3 Инструменти и оборудване
3.1 Високоефективна течна хроматография (HPLC): хроматографска работна станция или интегратор с UV детектор и софтуер за обработка на данни от GPC.
3.2 Устройство за вакуумна филтрация и дегазация на мобилна фаза.
3.3 Електронна везна: градуирана стойност 0,000 1 g.
4 стъпки на работа
4.1 Хроматографски условия и експерименти за адаптация на системата (референтни условия)
- 4.1.1 Хроматографска колона: TSKgelG2000swxl300 mm × 7.8 mm (вътрешен диаметър) или други гел колони от същия тип с подобни характеристики, подходящи за определяне на протеини и пептиди.
- 4.1.2 Мобилна фаза: Ацетонитрил + вода + трифлуороцетна киселина = 20 + 80 + 0,1.
- 4.1.3 Дължина на вълната на детектиране: 220 nm.
- 4.1.4 Дебит: 0,5 мл/мин.
- 4.1.5 Време за откриване: 30 мин.
- 4.1.6 Обем на инжектираната проба: 20 μL.
- 4.1.7 Температура на колоната: стайна температура.
- 4.1.8 За да може хроматографската система да отговаря на изискванията за откриване, беше предвидено при горепосочените хроматографски условия ефективността на гел хроматографската колона, т.е. теоретичният брой плаки (N), да бъде не по-малка от 10000, изчислено въз основа на пиковете на трипептидния стандарт (глицин-глицин-глицин).
- 4.2 Построяване на стандартни криви на относителна молекулна маса
- Горните различни стандартни разтвори на пептиди с относителна молекулна маса и масова концентрация от 1 mg/mL бяха приготвени чрез съвпадение на мобилни фази, смесени в определено съотношение и след това филтрирани през органична фазова мембрана с размер на порите 0,2 μm~0,5 μm и инжектирани в пробата, след което бяха получени хроматограмите на стандартите. Калибровъчните криви на относителната молекулна маса и техните уравнения бяха получени чрез нанасяне на логаритъма на относителната молекулна маса спрямо времето на задържане или чрез линейна регресия.
4.3 Обработка на пробата
В 10-милилитрова мерителна колба се претеглят точно 10 mg проба, добавя се малко подвижна фаза, разклаща се ултразвуково в продължение на 10 минути, така че пробата да се разтвори напълно и да се смеси, разрежда се с подвижната фаза до скалата и след това се филтрира през органична фазова мембрана с размер на порите 0,2 μm ~ 0,5 μm, а филтратът се анализира съгласно хроматографските условия в A.4.1.
- 5. Изчисляване на относителното разпределение на молекулната маса
- След анализ на разтвора на пробата, приготвен в 4.3, при хроматографските условия от 4.1, относителната молекулна маса на пробата и нейният диапазон на разпределение могат да бъдат получени чрез заместване на хроматографските данни на пробата в калибрационната крива 4.2 със софтуер за обработка на данни от GPC. Разпределението на относителните молекулни маси на различните пептиди може да се изчисли чрез метода за нормализиране на площта на пиковете, съгласно формулата: X=A/A общо×100
- Във формулата: X - Масовата фракция на пептид с относителна молекулна маса в общия пептид в пробата, %;
- A - Площ на пика на пептид с относителна молекулна маса;
- Общо А - сумата от площите на пиковете на всеки пептид с относителна молекулна маса, изчислена до един знак след десетичната запетая.
- 6 Повторяемост
- Абсолютната разлика между две независими определяния, получени при условия на повторяемост, не трябва да надвишава 15% от средноаритметичната стойност на двете определяния.
- Приложение Б: Методи за определяне на свободни аминокиселини
- Приемане на стандарт: Q/320205 KAVN05-2016
- 1.2 Реактиви и материали
- Ледена оцетна киселина: аналитично чиста
- Перхлорна киселина: 0,0500 mol/L
- Индикатор: 0,1% кристално виолетово индикатор (ледена оцетна киселина)
- 2. Определяне на свободни аминокиселини
Пробите бяха сушени при 80°C в продължение на 1 час.
Поставете пробата в сух контейнер, за да се охлади естествено до стайна температура или да се охлади до използваема температура.Претеглете приблизително 0,1 g проба (с точност до 0,001 g) в суха конична колба с вместимост 250 mL.Бързо преминете към следващата стъпка, за да предотвратите абсорбирането на влага от околната среда от пробата.Добавете 25 мл ледена оцетна киселина и разбъркайте добре за не повече от 5 минути.Добавете 2 капки кристално виолетов индикаторТитрувайте с 0,0500 mol/L (±0,001) стандартен титрувателен разтвор на перхлорна киселина, докато разтворът промени цвета си от лилав до крайната точка.
Запишете обема на консумирания стандартен разтвор.
- Проведете празната проба едновременно.
- 3. Изчисление и резултати
- Съдържанието на свободни аминокиселини X в реактива се изразява като масова фракция (%) и се изчислява по формулата: X = C × (V1-V0) × 0,1445/M × 100%, по формулата:
- C - Концентрация на стандартен разтвор на перхлорна киселина в молове на литър (mol/L)
- V1 - Обем, използван за титруване на проби със стандартен разтвор на перхлорна киселина, в милилитри (mL).
- Vo - Обем, използван за титруване на празна проба със стандартен разтвор на перхлорна киселина, в милилитри (mL);
M - Маса на пробата, в грамове (g).
| 0,1445: Средна маса на аминокиселините, еквивалентна на 1,00 mL стандартен разтвор на перхлорна киселина [c (HClO4) = 1,000 mol / L]. | 4.2.3 Стандартен титруващ разтвор на цериев сулфат: концентрация c [Ce(SO4)2] = 0,1 mol/L, приготвен съгласно GB/T601. | |
| Приемане на стандарти: Q/70920556 71-2024 | 1. Принцип на определяне (Fe като пример) | Железните комплекси на аминокиселините имат много ниска разтворимост в безводен етанол, а свободните метални йони са разтворими в безводен етанол. Разликата в разтворимостта между двете в безводен етанол е използвана за определяне на скоростта на хелатиране на железните комплекси на аминокиселините. |
| Във формулата: V1 - обемът на стандартния разтвор на цериев сулфат, изразходван за титруване на тестовия разтвор, mL; | Безводен етанол; останалата част е същата като в точка 4.5.2 от GB/T 27983-2011. | 3. Етапи на анализа |
| Направете два паралелни опита. Претеглете 0,1 g от пробата, изсушена при 103 ± 2 ℃ за 1 час, с точност до 0,0001 g, добавете 100 ml безводен етанол за разтваряне, филтрирайте, остатъкът от филтъра се промива със 100 ml безводен етанол поне три пъти, след което остатъкът се прехвърля в 250 ml конична колба, добавете 10 ml разтвор на сярна киселина съгласно точка 4.5.3 в GB/T27983-2011 и след това изпълнете следните стъпки съгласно точка 4.5.3 „Загрейте до разтваряне и след това оставете да се охлади“ в GB/T27983-2011. Проведете и празната проба едновременно. | 4. Определяне на общото съдържание на желязо | 4.1 Принципът на определяне е същият като в клауза 4.4.1 от GB/T 21996-2008. |
4.2. Реагенти и разтвори
| 4.2.1 Смесена киселина: Добавете 150 мл сярна киселина и 150 мл фосфорна киселина към 700 мл вода и разбъркайте добре. | 4.2.2 Индикаторен разтвор на натриев дифениламин сулфонат: 5 g/L, приготвен съгласно GB/T603. | 4.2.3 Стандартен титруващ разтвор на цериев сулфат: концентрация c [Ce(SO4)2] = 0,1 mol/L, приготвен съгласно GB/T601. | |
| 4.3 Етапи на анализа | Направете два паралелни опита. Претеглете 0,1 g от пробата с точност до 0,20001 g, поставете я в конична колба от 250 ml, добавете 10 ml смесена киселина, след разтваряне добавете 30 ml вода и 4 капки индикаторен разтвор на натриев дианилин сулфонат, след което изпълнете следните стъпки съгласно точка 4.4.2 от GB/T21996-2008. Проведете и празната проба едновременно. | 4.4 Представяне на резултатите | Общото съдържание на желязо X1 в железните комплекси на аминокиселините, изразено в масова фракция на желязото, стойността, изразена в %, е изчислена по формула (1): |
| X1=(V-V0)×C×M×10-3×100 | V0 - стандартен разтвор на цериев сулфат, изразходван за титруване на празен разтвор, mL; | V0 - стандартен разтвор на цериев сулфат, изразходван за титруване на празен разтвор, mL; | C - Действителна концентрация на стандартен разтвор на цериев сулфат, mol/L5. Изчисляване на съдържанието на желязо в хелатиСъдържанието на желязо X2 в хелата, изразено като масова фракция на желязото, стойността, изразена в %, е изчислена по формулата: x2 = ((V1-V2) × C × 0,05585)/m1 × 100 |
| Във формулата: V1 - обемът на стандартния разтвор на цериев сулфат, изразходван за титруване на тестовия разтвор, mL; | V2 - стандартен разтвор на цериев сулфат, изразходван за титруване на празен разтвор, mL;nom1 - Маса на пробата, g. За резултат от определянето се приема средноаритметичната стойност на резултатите от паралелното определяне, като абсолютната разлика между резултатите от паралелното определяне не е повече от 0,3%. | 0,05585 - маса на двувалентното желязо, изразена в грамове, еквивалентна на 1,00 mL стандартен разтвор на цериев сулфат C[Ce(SO4)2.4H20] = 1,000 mol/L.nom1 - Маса на пробата, g. За резултат от определянето се приема средноаритметичната стойност на резултатите от паралелното определяне, като абсолютната разлика между резултатите от паралелното определяне не е повече от 0,3%. | 6. Изчисляване на скоростта на хелацияСкорост на хелация X3, стойността, изразена в %, X3 = X2/X1 × 100Приложение В: Методи за определяне на скоростта на хелиране на Zinpro |
Приемане на стандарт: Q/320205 KAVNO7-2016
1. Реактиви и материали
а) Ледена оцетна киселина: аналитично чиста; б) Перхлорна киселина: 0,0500 mol/L; в) Индикатор: 0,1% кристално виолетово индикатор (ледена оцетна киселина)
2. Определяне на свободни аминокиселини
2.1 Пробите бяха сушени при 80°C в продължение на 1 час.
2.2 Поставете пробата в сух контейнер, за да се охлади естествено до стайна температура или да се охлади до използваема температура.
2.3 Претеглете приблизително 0,1 g от пробата (с точност до 0,001 g) в суха конична колба с вместимост 250 mL.
2.4 Бързо преминете към следващата стъпка, за да предотвратите абсорбирането на околна влага от пробата.
2.5 Добавете 25 мл ледена оцетна киселина и разбъркайте добре за не повече от 5 минути.
2.6 Добавете 2 капки индикатор кристал виолет.
2.7 Титрувайте със стандартен титруващ разтвор на перхлорна киселина с концентрация 0,0500 mol/L (±0,001), докато разтворът се оцвети от лилаво в зелено в продължение на 15 секунди, без да променя цвета си в крайната точка.
2.8 Запишете обема на консумирания стандартен разтвор.
2.9 Проведете едновременно и празната проба.
- 3. Изчисление и резултати
- Каталонски
- Physicochemical parameters
V1 - Обем, използван за титруване на проби със стандартен разтвор на перхлорна киселина, в милилитри (mL).
Vo - Обем, използван за титруване на празна проба със стандартен разтвор на перхлорна киселина, в милилитри (mL);
c) Chelation rate: ≥ 95%
d) Arsenic: ≤ 2 mg/kg
e) Lead: ≤ 5 mg/kg
f) Cadmium: ≤ 5 mg/kg
g) Moisture content: ≤ 5.0%
h) Fineness: All particles pass through 20 mesh, with a main particle size of 60-80 mesh
Адрес: No.147 Qingpu Road, Shouan Town, Pujiang County, Pujiang City, Chengdu, Province Sichuan, China
Телефон: 86-18880477902
Продукти
Неорганични микроелементи
- Органични микроелементи
- Суахили
- Персонализирано обслужване
- Бързи връзки
Профил на компанията
| Application object | Suggested dosage (g/t full-value material) | Content in full-value feed (mg/kg) | Efficacy |
| Гуджарати | Кликнете за запитване | © Авторско право - 2010-2025: Всички права запазени. | Карта на сайта ТОП ТЪРСЕНЕ Телефон |
| Тел. | 86-18880477902 | Явански | Имейл |
| 8618880477902 | китайски | френски | |
| Bird | китайски | френски | Немски испански |
| Aquatic animals | японски | Корейски | Арабски гръцки |
| турски | Италиански | ||
| Ruminant animal g/head day | January 0.75 | Индонезийски африкаанс шведски |
полски
- Баски
- Каталонски
- Physicochemical parameters
Хинди
Лао
c) Chelation rate: ≥ 95%
d) Arsenic: ≤ 2 mg/kg
e) Lead: ≤ 5 mg/kg
f) Cadmium: ≤ 5 mg/kg
g) Moisture content: ≤ 5.0%
h) Fineness: All particles pass through 20 mesh, with a main particle size of 60-80 mesh
Шона
български
- Себуано
- This product is chemically stable and can significantly reduce its damage to vitamins and fats, etc. The use of this product is conducive to improving feed quality;
- The product is absorbed through small peptide and amino acid pathways, reducing the competition and antagonism with other trace elements, and has the best bio-absorption and utilization rate;
- Хърватски
Холандски
| Application object | Урду Виетнамски | Content in full-value feed (mg/kg) | Efficacy |
| Гуджарати | хаитянски | Хауса | Киняруанда Хмонг Унгарски |
| Piglets and fattening pigs | Игбо | Явански | Каннада кхмерски кюрдски |
| Киргизски | Латински | ||
| Bird | 300～400 | 45～60 | Македонски Малайски Малаялам |
| Aquatic animals | 200～300 | 30～45 | 1. Promote growth, improve feed conversion; 2. Improve anti-stress abolity, reduce morbidity and mortality. |
норвежки
- пущунски
- Appearance: brownish-yellow granules
- Physicochemical parameters
сръбски
Сесото
c) Chelation rate: ≥ 95%
d) Arsenic: ≤ 2 mg/kg
e) Lead: ≤ 5 mg/kg
f) Cadmium: ≤ 5 mg/kg
g) Moisture content: ≤ 5.0%
h) Fineness: All particles pass through 20 mesh, with a main particle size of 60-80 mesh
Шона
Синдхи
This product is an all-organic trace mineral chelated by a special chelating proces with pure plant enzymatic small molecule peptides as chelating substrates and trace elements;
Суахили
таджикски
Тамилски
Телугу
тайландски
| Application object | Урду Виетнамски | Content in full-value feed (mg/kg) | Efficacy |
| Идиш | Йоруба | Зулу | Киняруанда Ория Туркменски |
| Уйгур | 250～400 | 37.5～60 | 1. Improving the immunity of piglets, reducing diarrhea and mortality; 2. Improving palatability, increasing feed intake, increasing growth rate and improving feed conversion; 3. Make the pig coat bright and improve the carcass quality and meat quality. |
| Bird | 300～400 | 45～60 | 1. Improve feather glossiness; 2. improve the laying rate, fertilization rate and hatching rate of breeding eggs, and strengthen the coloring ability of egg yolk; 3. Improve anti-stress ability and reduce mortality; 4. Improve feed conversion and increase growth rate. |
| Aquatic animals | January 300 | 45 | 1. Promote growth, improve feed conversion; 2. Improve anti-stress abolity, reduce morbidity and mortality. |
| Ruminant animal g/head day | 2.4 | 1. Improve milk yield, prevent mastitis and foof rot, and reduce somatic cell content in milk; 2. Promote growth, improve feed conversion and improve meat quality. |
4. Manganese Amino Acid Chelate Feed Grade
- Product Name: Manganese Amino Acid Chelate Feed Grade
- Appearance: brownish-yellow granules
- Physicochemical parameters
a) Mn: ≥ 10.0%
b) Total amino acids: ≥ 19.5%
c) Chelation rate: ≥ 95%
d) Arsenic: ≤ 2 mg/kg
e) Lead: ≤ 5 mg/kg
f) Cadmium: ≤ 5 mg/kg
g) Moisture content: ≤ 5.0%
h) Fineness: All particles pass through 20 mesh, with a main particle size of 60-80 mesh
n=0, 1,2,...indicates chelated manganese for dipeptides, tripeptides, and tetrapeptides
Characteristics of Manganese Amino Acid Chelate Feed Grade
This product is an all-organic trace mineral chelated by a special chelating proces with pure plant enzymatic small molecule peptides as chelating substrates and trace elements;
This product is chemically stable and can significantly reduce its damage to vitamins and fats, etc. The use of this product is conducive to improving feed quality;
The product is absorbed through small peptide and amino acid pathways, reducing the competition and antagonism with other trace elements, and has the best bio-absorption and utilization rate;
The product can improve the growth rate, improve feed conversion and health status significantly; and improve the laying rate, hatching rate and healthy chick rate of breeding poultry obviously;
Manganese is necessary for bone growth and connective tissue maintenance. It is closely related to many enzymes; and participates in carbohydrate, fat and protein metabolism, reproduction and immune response.
Usage and Efficacy of Manganese Amino Acid Chelate Feed Grade
| Application object | Suggested dosage (g/t full-value material) | Content in full-value feed (mg/kg) | Efficacy |
| Breeding pig | 200～300 | 30～45 | 1. Promote the normal development of sexual organs and improve sperm motility; 2. Improve the reproductive capacity of breeding pigs and reduce reproductive obstacles. |
| Piglets and fattening pigs | 100～250 | 15～37.5 | 1. It is beneficial to improve immune functions, and improve anti-stress ability and disease resistance; 2. Promote growth and improve feed conversion significantly; 3. Improve meat color and quality, and improve lean meat percentage. |
| Bird | 250～350 | 37.5～52.5 | 1. Improve anti-stress ability and reduce mortality; 2. Improve laying rate, fertilization rate and hatching rate of breeding eggs, improve eggshell quality and reduce shell breaking rate; 3. Promote bone growth and reduce the incidence of leg diseases. |
| Aquatic animals | 100～200 | 15～30 | 1. Promote growth and improve its anti-stress ability and disease resistance; 2. Improve sperm motility and hatching rate of fertilized eggs. |
| Ruminant animal g/head day | Cattle 1.25 | 1. Prevent fatty acid synthesis disorder and bone tissue damage; 2. Improve reproductive capacity, prevent abortion and postpartum paralysis of female animals, reduce the mortality of calves and lambs, and increase the newborn weight of young animals. | |
| Goat 0.25 |
Part 6 FAB of Small Peptide-mineral Chelates
| S/N | F: Functional attributes | A: Competitive differences | B: Benefits brought by competitive differences to users |
| 1.52 | Selectivity control of raw materials | Select pure plant enzymatic hydrolysis of small peptides | High biological safety, avoiding cannibalism |
| 2 | Directional digestion technology for double protein biological enzyme | High proportion of small molecular peptides | More "targets", which are not easy to saturation, with high biological activity and better stability |
| 3 | Advanced pressure spray & drying technology | Granular product, with uniform particle size, better fluidity, not easy to absorb moisture | Ensure easy to use, more uniform mixing in complete feed |
| Low water content (≤ 5%), which greatly reduces the influence caused by vitamins and enzyme preparations | Improve the stability of feed products | ||
| 4 | Advanced production control technology | Totally enclosed process, high degree of automatic control | Safe and stable quality |
| 5 | Advanced quality control technology | Establish and improve scientific and advanced analytical methods and control means for detecting factors affecting product quality, such as acid-soluble protein, molecular weight distribution, amino acids and chelating rate | Ensure quality, ensure efficiency and improve efficiency |
Part 7 Competitor Comparison
Standard VS Standard
Comparison of peptide distribution and chelation rate of products
| Sustar's products | Proportion of small peptides（180-500） | Zinpro's products | Proportion of small peptides（180-500） |
| AA-Cu | ≥74% | AVAILA-Cu | 78% |
| AA-Fe | ≥48% | AVAILA-Fe | 59% |
| AA-Mn | ≥33% | AVAILA-Mn | 53% |
| AA-Zn | ≥37% | AVAILA-Zn | 56% |
| Sustar's products | Chelation rate | Zinpro's products | Chelation rate |
| AA-Cu | 94.8% | AVAILA-Cu | 94.8% |
| AA-Fe | 95.3% | AVAILA-Fe | 93.5% |
| AA-Mn | 94.6% | AVAILA-Mn | 94.6% |
| AA-Zn | 97.7% | AVAILA-Zn | 90.6% |
The ratio of small peptides of Sustar is slightly lower than that of Zinpro, and the chelation rate of Sustar's products is slightly higher than that of Zinpro's products.
Comparison of the content of 17 amino acids in different products
| Name of amino acids | Sustar's Copper Amino Acid Chelate Feed Grade | Zinpro's AVAILA copper | Sustar's Ferrous Amino Acid C helate Feed Grade | Zinpro's AVAILA iron | Sustar's Manganese Amino Acid Chelate Feed Grade | Zinpro's AVAILA manganese | Sustar's Zinc Amino Acid Chelate Feed Grade | Zinpro's AVAILA zinc |
| aspartic acid (%) | 1.88 | 0.72 | 1.50 | 0.56 | 1.78 | 1.47 | 1.80 | 2.09 |
| glutamic acid (%) | 4.08 | 6.03 | 4.23 | 5.52 | 4.22 | 5.01 | 4.35 | 3.19 |
| Serine (%) | 0.86 | 0.41 | 1.08 | 0.19 | 1.05 | 0.91 | 1.03 | 2.81 |
| Histidine (%) | 0.56 | 0.00 | 0.68 | 0.13 | 0.64 | 0.42 | 0.61 | 0.00 |
| Glycine (%) | 1.96 | 4.07 | 1.34 | 2.49 | 1.21 | 0.55 | 1.32 | 2.69 |
| Threonine (%) | 0.81 | 0.00 | 1.16 | 0.00 | 0.88 | 0.59 | 1.24 | 1.11 |
| Arginine (%) | 1.05 | 0.78 | 1.05 | 0.29 | 1.43 | 0.54 | 1.20 | 1.89 |
| Alanine (%) | 2.85 | 1.52 | 2.33 | 0.93 | 2.40 | 1.74 | 2.42 | 1.68 |
| Tyrosinase (%) | 0.45 | 0.29 | 0.47 | 0.28 | 0.58 | 0.65 | 0.60 | 0.66 |
| Cystinol (%) | 0.00 | 0.00 | 0.09 | 0.00 | 0.11 | 0.00 | 0.09 | 0.00 |
| Valine (%) | 1.45 | 1.14 | 1.31 | 0.42 | 1.20 | 1.03 | 1.32 | 2.62 |
| Methionine (%) | 0.35 | 0.27 | 0.72 | 0.65 | 0.67 | 0.43 | January 0.75 | 0.44 |
| Phenylalanine (%) | 0.79 | 0.41 | 0.82 | 0.56 | 0.70 | 1.22 | 0.86 | 1.37 |
| Isoleucine (%) | 0.87 | 0.55 | 0.83 | 0.33 | 0.86 | 0.83 | 0.87 | 1.32 |
| Leucine (%) | 2.16 | 0.90 | 2.00 | 1.43 | 1.84 | 3.29 | 2.19 | 2.20 |
| Lysine (%) | 0.67 | 2.67 | 0.62 | 1.65 | 0.81 | 0.29 | 0.79 | 0.62 |
| Proline (%) | 2.43 | 1.65 | 1.98 | 0.73 | 1.88 | 1.81 | 2.43 | 2.78 |
| Total amino acids (%) | 23.2 | 21.4 | 22.2 | 16.1 | 22.3 | 20.8 | 23.9 | 27.5 |
Overall, the proportion of amino acids in Sustar's products is higher than that in Zinpro's products.
Part 8 Effects of use
Effects of different sources of trace minerals on the production performance and egg quality of laying hens in the late laying period
Production Process
- Targeted chelation technology
- Shear emulsification technology
- Pressure spray & drying technology
- Refrigeration & dehumidification technology
- Advanced environmental control technology
Appendix A: Methods for the Determination of relative molecular mass distribution of peptides
Adoption of standard: GB/T 22492-2008
1 Test Principle:
It was determined by high performance gel filtration chromatography. That is to say, using porous filler as stationary phase, based on the difference in the relative molecular mass size of the sample components for separation, detected at the peptide bond of the ultraviolet absorption wavelength of 220nm, using the dedicated data processing software for the determination of relative molecular mass distribution by gel filtration chromatography (i.e., the GPC software), the chromatograms and their data were processed, calculated to get the size of the relative molecular mass of the soybean peptide and the distribution range.
2. Reagents
The experimental water should meet the specification of secondary water in GB/T6682, the use of reagents, except for special provisions, are analytically pure.
2.1 Reagents include acetonitrile (chromatographically pure), trifluoroacetic acid (chromatographically pure),
2.2 Standard substances used in the calibration curve of relative molecular mass distribution: insulin, mycopeptides, glycine-glycine-tyrosine-arginine, glycine-glycine-glycine
3 Instrument and equipment
3.1 High Performance Liquid Chromatograph (HPLC): a chromatographic workstation or integrator with a UV detector and GPC data processing software.
3.2 Mobile phase vacuum filtration and degassing unit.
3.3 Electronic balance: graduated value 0.000 1g.
4 Operating steps
4.1 Chromatographic conditions and system adaptation experiments (reference conditions)
4.1.1 Chromatographic column: TSKgelG2000swxl300 mm×7.8 mm (inner diameter) or other gel columns of the same type with similar performance suitable for the determination of proteins and peptides.
4.1.2 Mobile phase: Acetonitrile + water + trifluoroacetic acid = 20 + 80 + 0.1.
4.1.3 Detection wavelength: 220 nm.
4.1.4 Flow rate: 0.5 mL/min.
4.1.5 Detection time: 30 min.
4.1.6 Sample injection volume: 20μL.
4.1.7 Column temperature: room temperature.
4.1.8 In order to make the chromatographic system meet the detection requirements, it was stipulated that under the above chromatographic conditions, the gel chromatographic column efficiency, i.e., the theoretical number of plates (N), was not less than 10000 calculated on the basis of the peaks of the tripeptide standard (Glycine-Glycine-Glycine).
4.2 Production of relative molecular mass standard curves
The above different relative molecular mass peptide standard solutions with a mass concentration of 1 mg / mL were prepared by mobile phase matching, mixed in a certain proportion, and then filtered through an organic phase membrane with the pore size of 0.2 μm~0.5 μm and injected into the sample, and then the chromatograms of the standards were obtained. Relative molecular mass calibration curves and their equations were obtained by plotting the logarithm of relative molecular mass against retention time or by linear regression.
4.3 Sample treatment
Accurately weigh 10mg of sample in a 10mL volumetric flask, add a little mobile phase, ultrasonic shaking for 10min, so that the sample is fully dissolved and mixed, diluted with mobile phase to the scale, and then filtered through an organic phase membrane with a pore size of 0.2μm~0.5μm, and the filtrate was analyzed according to the chromatographic conditions in A.4.1.
5. Calculation of relative molecular mass distribution
After analyzing the sample solution prepared in 4.3 under the chromatographic conditions of 4.1, the relative molecular mass of the sample and its distribution range can be obtained by substituting the chromatographic data of the sample into the calibration curve 4.2 with GPC data processing software. The distribution of the relative molecular masses of the different peptides can be calculated by the peak area normalization method, according to the formula: X=A/A total×100
In the formula: X - The mass fraction of a relative molecular mass peptide in the total peptide in the sample, %;
A - Peak area of a relative molecular mass peptide;
Total A - the sum of the peak areas of each relative molecular mass peptide, calculated to one decimal place.
6 Repeatability
The absolute difference between two independent determinations obtained under conditions of repeatability shall not exceed 15% of the arithmetic mean of the two determinations.
Appendix B: Methods for the Determination of Free Amino Acids
Adoption of standard: Q/320205 KAVN05-2016
1.2 Reagents and materials
Glacial acetic acid: analytically pure
Perchloric acid: 0.0500 mol/L
Indicator: 0.1% crystal violet indicator (glacial acetic acid)
2. Determination of free amino acids
The samples were dried at 80°C for 1 hour.
Place the sample in a dry container to cool naturally to room temperature or cool down to a usable temperature.
Weigh approximately 0.1 g of sample (accurate to 0.001 g) into a 250 mL dry conical flask.
Quickly proceed to the next step to avoid the sample from absorbing ambient moisture
Add 25 mL of glacial acetic acid and mix well for no more than 5 min.
Add 2 drops of crystal violet indicator
Titrate with 0.0500 mol / L (±0.001) standard titration solution of perchloric acid until the solution changes from purple to the end point.
Record the volume of standard solution consumed.
Carry out the blank test at the same time.
3. Calculation and results
The free amino acid content X in the reagent is expressed as a mass fraction (%) and is calculated according to the formula: X = C × (V1-V0) × 0.1445/M × 100%, in tne formula:
C - Concentration of standard perchloric acid solution in moles per liter (mol/L)
V1 - Volume used for titration of samples with standard perchloric acid solution, in milliliters (mL).
Vo - Volume used for titration blank with standard perchloric acid solution, in milliliters (mL);
M - Mass of the sample, in grams (g ).
0.1445: Average mass of amino acids equivalent to 1.00 mL of standard perchloric acid solution [c (HClO4) = 1.000 mol / L].
Appendix C: Methods for the Determination of Sustar's chelation rate
Adoption of standards: Q/70920556 71-2024
1. Determination principle (Fe as an example)
Amino acid iron complexes have very low solubility in anhydrous ethanol and free metal ions are soluble in anhydrous ethanol, the difference in solubility between the two in anhydrous ethanol was utilized to determine the chelation rate of amino acid iron complexes.
2. Reagents & Solutions
Anhydrous ethanol; the rest is the same as clause 4.5.2 in GB/T 27983-2011.
3. Steps of analysis
Do two trials in parallel. Weigh 0.1g of the sample dried at 103±2℃ for 1 hour, accurate to 0.0001g, add 100mL of anhydrous ethanol to dissolve, filter, filter residue washed with 100mL of anhydrous ethanol for at least three times, then transfer the residue into a 250mL conical flask, add 10mL of sulfuric acid solution according to clause 4.5.3 in GB/T27983-2011, and then perform the following steps according to clause 4.5.3 “Heat to dissolve and then let cool” in GB/T27983-2011. Carry out the blank test at the same time.
4. Determination of total iron content
4.1 The principle of determination is the same as clause 4.4.1 in GB/T 21996-2008.
4.2. Reagents & Solutions
4.2.1 Mixed acid: Add 150mL of sulfuric acid and 150mL of phosphoric acid to 700mL of water and mix well.
4.2.2 Sodium diphenylamine sulfonate indicator solution: 5g/L, prepared according to GB/T603.
4.2.3 Cerium sulfate standard titration solution: concentration c [Ce (SO4) 2] = 0.1 mol/L, prepared according to GB/T601.
4.3 Steps of analysis
Do two trials in parallel. Weigh 0.1g of sample, accurate to 020001g, place in a 250mL conical flask, add 10mL of mixed acid, after dissolution, add 30ml of water and 4 drops of sodium dianiline sulfonate indicator solution, and then perform the following steps according to clause 4.4.2 in GB/T21996-2008. Carry out the blank test at the same time.
4.4 Representation of results
The total iron content X1 of the amino acid iron complexes in terms of mass fraction of iron, the value expressed in %, was calculated according to formula (1):
X1=(V-V0)×C×M×10-3×100
In the formula: V - volume of cerium sulfate standard solution consumed for titration of test solution, mL;
V0 - cerium sulfate standard solution consumed for titration of blank solution, mL;
C - Actual concentration of cerium sulfate standard solution, mol/L
5. Calculation of iron content in chelates
The iron content X2 in the chelate in terms of the mass fraction of iron, the value expressed in %, was calculated according to the formula: x2 = ((V1-V2) × C × 0.05585)/m1 × 100
In the formula: V1 - volume of cerium sulfate standard solution consumed for titration of test solution, mL;
V2 - cerium sulfate standard solution consumed for titration of blank solution, mL;
C - Actual concentration of cerium sulfate standard solution, mol/L;
0.05585 - mass of ferrous iron expressed in grams equivalent to 1.00 mL of cerium sulfate standard solution C[Ce(SO4)2.4H20] = 1.000 mol/L.
m1-Mass of the sample, g. Take the arithmetic mean of the parallel determination results as the determination results, and the absolute difference of the parallel determination results is not more than 0.3%.
6. Calculation of chelation rate
Chelation rate X3, the value expressed in %, X3 = X2/X1 × 100
Appendix C: Methods for the Determination of Zinpro's chelation rate
Adoption of standard: Q/320205 KAVNO7-2016
1. Reagents and materials
a) Glacial acetic acid: analytically pure; b) Perchloric acid: 0.0500mol/L; c) Indicator: 0.1% crystal violet indicator (glacial acetic acid)
2. Determination of free amino acids
2.1 The samples were dried at 80°C for 1 hour.
2.2 Place the sample in a dry container to cool naturally to room temperature or cool down to a usable temperature.
2.3 Weigh approximately 0.1 g of sample (accurate to 0.001 g) into a 250 mL dry conical flask
2.4 Quickly proceed to the next step to avoid the sample from absorbing ambient moisture.
2.5 Add 25mL of glacial acetic acid and mix well for no more than 5min.
2.6 Add 2 drops of crystal violet indicator.
2.7 Titrate with 0.0500mol/L (±0.001) standard titration solution of perchloric acid until the solution changes from purple to green for 15s without changing color as the end point.
2.8 Record the volume of standard solution consumed.
2.9 Carry out the blank test at the same time.
3. Calculation and results
The free amino acid content X in the reagent is expressed as a mass fraction (%), calculated according to formula (1): X=C×(V1-V0) ×0.1445/M×100%...... .......(1)
In the formula: C - concentration of standard perchloric acid solution in moles per liter (mol/L)
V1 - Volume used for titration of samples with standard perchloric acid solution, in milliliters (mL).
Vo - Volume used for titration blank with standard perchloric acid solution, in milliliters (mL);
M - Mass of the sample, in grams (g ).
0.1445 - Average mass of amino acids equivalent to 1.00 mL of standard perchloric acid solution [c (HClO4) = 1.000 mol / L].
4. Calculation of chelation rate
The chelation rate of the sample is expressed as mass fraction (%), calculated according to formula (2): chelation rate = (total amino acid content - free amino acid content)/total amino acid content×100%.
Post time: Sep-17-2025
